
Badania BMPTłuszcze, oleje i uboczne produkty pochodzenia zwierzęcego
Krew z uboju — BMP: 2 badania, średnia ważona 496 m³ CH₄/t s.m.o.
Krew z uboju to produkt uboczny pochodzenia zwierzęcego (UPPZ), bardzo bogaty w białko; rekordy dotyczą krwi drobiowej i świńskiej z różnych prac.
Ilustracja: Substraty.pl (AI, Google Gemini)
- Średnia ważona
- 496m³ CH₄/t s.m.o.
- Zakres
- 491–500m³ CH₄/t s.m.o.
- Rekordy
- 2badania
- Publikacje
- 2źródła
- Temperatury
- 38 °Ctestu
Metan w biogazie
Średnia zawartość metanu · ≈ 5,8 kWh/m³ biogazu
szacunek z typu substratu W zebranych badaniach brak pomiaru. Przedział wynika z przybliżonego składu (bogaty w białko (klasyfikacja procesowa)) i wydajności grup związków wg FNR.
Ocena dla biogazowni
brak oceny — ocena redakcji dla biogazowni
Brak oceny: brak suchej masy lub suchej masy organicznej w danych. Ocenę liczymy, gdy znamy suchą masę i suchą masę organiczną materiału.
Dodaj do kalkulatora kofermentacji Dane CSV
Krzywe BMP z 2 badań
Średnia ważona Pojedyncze rekordy
Linie przerywane to przebieg modelowy (kinetyka I rzędu, B(t) = B₀·(1 − e−kt)); z publikacji pochodzi punkt końcowy. Wszystkie krzywe są modelowe.
Skumulowana produkcja metanu w czasie testu [m³ CH₄/t s.m.o.]. Gruba linia to średnia ważona wszystkich rekordów (496); kropki oznaczają wartości końcowe podane w publikacjach. Wskaż wykres, aby odczytać wartości; kliknij pozycję legendy, aby ukryć lub pokazać rekord.
Rekordy i źródła
Pobierz CSV| Źródło | BMP m³ CH₄/t s.m.o. | Temperatura | Próbka | Krzywa |
|---|---|---|---|---|
| Salminen i in. (2003) DOI | 500 | — | krew drobiowa (oryg.: „Poultry blood”) | punkt końcowy (krzywa modelowa) |
| Yoon i in. (2014) DOI | 491 | 38 °C · mezofilowy | krew świńska (oryg.: „Blood (piggery slaughterhouse)”) | punkt końcowy (krzywa modelowa) |
| Średnia ważona | 496 | średnia arytmetyczna 496, SD 6 | ||
Właściwości procesowe
Niska pewność: opis oparty na ogólnych cechach grupy substratów, a nie na badaniach tego materiału. Traktuj go jako wskazówkę do weryfikacji.
Zalety
- Potencjał metanowy w zbiorze BMP Substraty.pl: średnia ważona 495.5 m³ CH₄/t s.m.o. (SD 6.4; 2 rekordów, 2 źródeł).
- Krew uboju była badana jako jeden ze składników produktów ubocznych ubojni o wysokim potencjale gazowym przy współfermentacji (Hejnfelt i Angelidaki 2009).
Wady i ryzyka
- Rozkład białka uwalnia amoniak - w wyższym pH i temperaturze rośnie udział wolnego NH3, który hamuje metanogenezę (Rajagopal i in. 2013; Hansen i in. 1998).
- Siarka z białek zwiększa H2S w biogazie (Chen i in. 2008).
Kofermentacja — z czym łączyć, na co uważać
- dobrze łączyć
substraty: bogaty w węgiel — np. Słoma pszenna, Kiszonka z kukurydzy (cała roślina), Słoma zbożowa (gatunek nieokreślony), Wierzba energetyczna (Salix), Tektura i karton
Substraty węglowe (pieczywo, kiszonki, wysłodki) obniżają C/N wsadu i zmniejszają ryzyko amoniaku.[1][2]
- uważaj
substraty: bogaty w białko — np. Odpady żywności (resztki jedzenia, odpady kuchenne), Osad ściekowy komunalny (mieszany, nieokreślony), Pomiot drobiowy (kurzy, indyczy), Bioodpady komunalne (frakcja organiczna odpadów komunalnych), Skoszona trawa z trawników
Krew + inne białko (pióra, mięso, makuchy): sumują się ładunki azotu i amoniak.[2][3]
- uważaj
substraty: bogaty w tłuszcze — np. Odpady żywności (resztki jedzenia, odpady kuchenne), Fusy kawowe (zużyta kawa), Osad wstępny (pierwotny), Nasiona słonecznika, Wytłoki z oliwek (pomace, alperujo)
Krew + tłuszcz poubojowy: dwa inhibitory naraz.[4]
Dawkowanie
Brak źródłowego progu dla samej krwi. Kierować się kontrolą NH4-N/NH3 i pH: stosować w małym udziale z gnojowicą o niskiej koncentracji N, bez wprowadzania do reaktora termofilowego bez adaptacji. Zaczynać od niskiej dawki.
Wprowadzaj stopniowo, zaczynając od małej dawki i obserwując proces (np. FOS/TAC, pH, skład gazu).
Wymagania praktyczne
- UPPZ kat. 3 (art. 10 rozp. 1069/2009; do biogazowni dopuszczone art. 14): przed komorą higienizacja w nieomijalnym węźle — rozdrobnienie do maks. 12 mm, temperatura w całej masie min. 70 °C przez min. 60 min bez przerwy (rozp. 142/2011, zał. V rozdz. I sekcja 1 i rozdz. III sekcja 1); instalacja wymaga zatwierdzenia przez właściwy organ (art. 24 ust. 1 lit. g rozp. 1069/2009).
- Higienizowanego substratu nie podawać do komory na gorąco (FNR 2010, rozdz. 3 — higienizacja).
Źródła danych procesowych
- Hagos i in. (2017). Anaerobic co-digestion process for biogas production: progress, challenges and perspectives. Renew. Sustain. Energy Rev.
- Rajagopal, Masse, Singh (2013). A critical review on inhibition of anaerobic digestion process by excess ammonia. Bioresour. Technol.
- Hansen, Angelidaki, Ahring (1998). Anaerobic digestion of swine manure: inhibition by ammonia. Water Res.
- Palatsi i in. (2011). Anaerobic digestion of slaughterhouse waste: main process limitations and microbial community interactions. Bioresour. Technol.
- Hejnfelt, Angelidaki (2009). Anaerobic digestion of slaughterhouse by-products. Biomass Bioenergy
- Chen, Cheng, Creamer (2008). Inhibition of anaerobic digestion process: A review. Bioresour. Technol.
- Salminen, Rintala (2002). Anaerobic digestion of organic solid poultry slaughterhouse waste - a review. Bioresour. Technol.
- Rozporządzenie (WE) nr 1069/2009 określające przepisy sanitarne dotyczące produktów ubocznych pochodzenia zwierzęcego (art. 9, 10, 12–14, 24)
- Rozporządzenie Komisji (UE) nr 142/2011 wykonujące rozporządzenie (WE) nr 1069/2009 (zał. IV rozdz. III, zał. V rozdz. I i III)
- FNR (2010). Guía sobre el Biogás – Desde la producción hasta el uso (hiszp. wydanie „Leitfaden Biogas”, GIZ 2013)
Ocenę konkretnej mieszanki z tym substratem pokaże kalkulator kofermentacji.
Czym jest i skąd się bierze
Krew pozyskiwana w rzeźniach to płynny produkt uboczny uboju zwierząt rzeźnych, w tym drobiu i trzody chlewnej. W Unii Europejskiej jest ona ubocznym produktem pochodzenia zwierzęcego (UPPZ) w rozumieniu rozporządzenia (WE) nr 1069/2009. W zależności od pochodzenia i kontroli weterynaryjnej trafia do określonej kategorii materiału, a przy zakwalifikowaniu do kategorii 3 może być przetwarzana w biogazowni. Warunkiem jest zatwierdzenie instalacji przez organy weterynaryjne i spełnienie wymogów higienizacji. W zbiorze jest kilka rekordów: krew drobiowa i krew świńska.
Właściwości istotne dla fermentacji
Krew zawiera głównie wodę i białka (hemoglobina, albuminy), z niewielką ilością tłuszczu i węglowodanów, dlatego jej rozkład prowadzi do silnego uwalniania amoniaku. Zawiera także żelazo i siarkę (w białkach), co może zwiększać ilość siarkowodoru w biogazie. Wysoki ładunek azotu stanowi ryzyko inhibicji metanogenezy, szczególnie w warunkach termofilowych i przy wysokim pH. Krew łatwo ścina się i może tworzyć zlepy utrudniające mieszanie.
Jak czytać rozrzut wyników
Rekordy pochodzą od różnych gatunków zwierząt i z różnych prac, więc nie są powtórzeniami. Jeden został odczytany ze streszczenia bez podanej temperatury, drugi z tabeli pracy o zakładzie przetwórstwa. Wpływ mają zawartość wody, czas i sposób przechowywania (rozkład białek), dodatek antykoagulantów, stosunek substratu do inokulum oraz adaptacja osadu do amoniaku. Wynik wysoki w teście okresowym nie musi się powtórzyć w instalacji ciągłej, gdzie narasta stężenie amoniaku.
W praktyce biogazowni
Krew najlepiej stosować jako niewielki dodatek do większej ilości substratów bogatych w węgiel i o dużej pojemności buforowej, np. gnojowicy. Dawkowanie powinno być stopniowe, a stężenie azotu amonowego monitorowane. Instalacja musi mieć zatwierdzenie na przetwarzanie UPPZ, stosować wymagane parametry higienizacji i prowadzić dokumentację handlową. Poferment z materiałów kategorii 3 podlega dodatkowym zasadom wykorzystania.
Metodyka w skrócie
BMP to ilość metanu uzyskana z suchej masy organicznej (s.m.o., ang. VS) w teście okresowym, podawana w m³ CH₄ na tonę s.m.o. (liczbowo tyle samo co NmL CH₄/g VS w publikacjach) i przeliczona na warunki normalne (0 °C, 101,325 kPa). Średnia ważona daje każdej publikacji łączną wagę 1, dzieloną po równo między jej wyniki dla danego substratu — praca z dwudziestoma odmianami nie przeważa pracy z jedną próbką. W programach międzylaboratoryjnych jednostką jest laboratorium (łączna waga 1), a w jego obrębie waga testu rośnie z liczbą butelek (powtórzeń). Wyniki po obróbce wstępnej (np. termicznej, chemicznej, enzymatycznej) pokazujemy osobno i nie wliczamy ich do średniej.
Linie ciągłe to krzywe zmierzone w testach. Gdy publikacja podaje tylko wynik końcowy, rysujemy przebieg modelowy kinetyki pierwszego rzędu, B(t) = B₀·(1 − e−kt): z publikacji pochodzi wyłącznie punkt końcowy, a kształt krzywej służy jedynie wizualizacji — nie odczytuj z niego produkcji w konkretnym dniu. Dla tego substratu przyjęto k = 0,091 d−1 (brak danych kinetycznych dla grupy – przyjęto medianę wszystkich dostępnych stałych k (93 wartości) = 0.091 d⁻¹).
Statystyki opisują rozrzut opublikowanych wyników — to zestawienie opisowe, a nie metaanaliza ani gwarancja uzysku w instalacji.
Bibliografia
- Salminen, E.; Einola, J.; Rintala, J. (2003). The methane production of poultry slaughtering residues and effects of pre‐treatments on the methane production of poultry feather. Environmental Technology 24(9), 1079–1086. DOI: 10.1080/09593330309385648 DOI
- Yoon, Y.M.; Kim, S.H.; Shin, K.S.; Kim, C.H. (2014). Effects of Substrate to Inoculum Ratio on the Biochemical Methane Potential of Piggery Slaughterhouse Wastes. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences 27(4), 600–607. DOI: 10.5713/ajas.2013.13537 DOI
Wszystkie źródła serwisu: bibliografia.



